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iFluor 670琥珀酰亚胺酯

英文名称:iFluor® 670 succinimidyl ester
产品参数
Ex (nm)671Em (nm)682
分子量923.15溶剂DMSO
存储条件在零下15度以下保存, 避免光照
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产品优势

1.高水溶性: 可以不用有机溶剂进行偶联,在储存期间不易沉淀;

2.出色的光稳定性:好的光稳定性可以实现更长时间的图像捕捉;

3.荧光亮度强:比其他光谱相似偶联物(例如 Alexa Fluor® 染料、荧光素染料、花菁染料等)的荧光更强;

4.pH值不敏感:在广泛的pH范围内具有很高的荧光强度;

 

适用范围

主要用于标记蛋白或抗体

 

产品介绍

AAT Bioquest的iFluor 670琥珀酰亚胺酯对标记蛋白质(尤其是抗体)进行了优化。这些染料明亮、光稳定,并且对蛋白质的猝灭作用最小,是与蛋白或抗体偶联的常用工具。NHS 酯可用于标记蛋白、胺修饰的寡核苷酸和其他含胺分子的伯胺 (R-NH2)。

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实验方案

溶液配制

除非另有说明,所有未使用的储备液应在制备后分装,在 -20°C 下储存避免反复冻融

1.准备蛋白质储备溶液(溶液A):

将 100 µL 反应缓冲液(例如,pH 值约为 8.5 至 9.0 的 1 M 碳酸氢钠溶液或 1 M 磷酸盐缓冲液)与 900 µL 目标蛋白溶液(例如,抗体、蛋白质浓度 > 2 mg/mL(如果可能))混合得到 1 mL 蛋白质标记储备液。

注1:蛋白质溶液(溶液A)的pH值应为8.5±0.5。如果蛋白质溶液的pH低于8.0,则使用1M碳酸氢钠溶液或1M pH 9.0磷酸盐缓冲液将pH调节至8.0-9.0的范围。

注2:蛋白质应溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸盐缓冲盐水(PBS)中。如果蛋白质溶解在Tris或甘氨酸缓冲液中,则必须用pH7.2-7.4的1X PBS透析,除去蛋白质沉淀的游离胺或铵盐(例如硫酸铵和乙酸铵)。

注3:不纯的抗体、稳定的牛血清蛋白(BSA)抗体或明胶不会被很好的标记。叠氮化钠或硫柳汞的存在也可能干扰缀合反应。可以通过透析或旋转柱除去叠氮化钠或硫柳汞,获得好的标记结果。

注4:如果蛋白质浓度低于2 mg / mL,标记效率会显着降低。为获得合适标记效率,建议蛋白质浓度范围为2-10 mg / mL。

 

2.准备染料储备溶液(溶液B):

将无水DMSO加入到iFluor 670 SE小瓶中制备10mM储备溶液。 通过移液或涡旋混合均匀。

注意:在开始缀合前准备染料储备溶液(溶液B),立即使用。 染料储备溶液的长期储存会降低染料活性。 溶液B可在冰箱中保存两周,避光保存。 避免反复冻融。

 

样本实验方案

(本方案适用 Goat anti-mouse IgG 和iFluor 670 SE的共轭,每种蛋白质都需要不同的染料/蛋白质比例,这也取决于染料的性质。蛋白质的过度标记可能影响其结合亲和力,而低染料/蛋白质比率的蛋白质缀合物会降低灵敏度。)

进行偶联反应:

1.使用10:1摩尔比的溶液B(染料)/溶液A(蛋白质)作为起始点:将5μl染料储备溶液(溶液B,假设染料储备溶液为10 mM)加入到样品瓶中。蛋白质溶液(95μl溶液A)有效摇动。假设蛋白质浓度为10mg / mL,蛋白质的分子量为~200KD,蛋白质的浓度为~0.05mM。

注意:建议使用溶液B(染料)/溶液A(蛋白质)的摩尔比为10:1。如果太少或太高,可以尝试5:1、15:1和20:1来确定合适的染料/蛋白质比。

2.在室温下继续旋转或摇动反应混合物30-60分钟

 

纯化偶联

(以下方案是使用Sephadex G-25柱纯化染料蛋白偶联物的一个例子)

1.按照产品说明准备Sephadex G-25柱。

2.将“进行偶联反应”步骤中的反应混合物装入Sephadex G-25柱的顶部。

3.当样品刚低于顶部树脂表面时,立即加入PBS(pH 7.2-7.4)。

4.向样品中加入更多的PBS(pH 7.2-7.4)完成柱子纯化。将含有目标染料-蛋白质缀合物的组分合并。

注意:如果需要立即使用,染料-蛋白质缀合物物需要用染色缓冲液稀释,并分装。

注意:为了长期储存,染料蛋白缀合物溶液需要浓缩或冷冻干燥。

 

试剂应用文献

Photobleaching Comparison of R-Phycoerythrin-Streptavidin and Streptavidin-Alexa Fluor 568 in a Breast Cancer Cell Line
Authors: Ostad, S. N., Babaei, S., Bayat, A. A., Mahmoudian, J.
Journal: Monoclon Antib Immunodiagn Immunother (2019): 25-29
 
A combined solvatochromic shift and TDDFT study probing solute-solvent interactions of blue fluorescent Alexa Fluor 350 dye: Evaluation of ground and excited state dipole moments
Authors: Patil, M. K., Kotresh, M. G., Inamdar, S. R.
Journal: Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc (2019): 142-152
 
Comparison between photostability of Alexa Fluor 448 and Alexa Fluor 647 with conventional dyes FITC and APC by flow cytometry
Authors: Rai, S., Bhardwaj, U., Misra, A., Singh, S., Gupta, R.
Journal: Int J Lab Hematol (2018): e52-e54
 
Development of new hCaM-Alexa Fluor((R)) biosensors for a wide range of ligands
Authors: Velazquez-Lopez, I., Leon-Cruz, E., Pardo, J. P., Sosa-Peinado, A., Gonzalez-Andrade, M.
Journal: Anal Biochem (2017): 13-22
 
Neuroanatomical basis of clinical joint application of "Jinggu" (BL 64, a source-acupoint) and "Dazhong" (KI 4, a Luo-acupoint) in the rat: a double-labeling study of cholera toxin subunit B conjugated with Alexa Fluor 488 and 594
Authors: Cui, J. J., Zhu, X. L., Ji, C. F., Jing, X. H., Bai, W. Z.
Journal: Zhen Ci Yan Jiu (2011): 262-7