逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)
逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)是一种核心分子技术,旨在检测和定量总RNA或信使RNA(mRNA),具有高灵敏度和准确性。在这个标准PCR过程的改进版本中,作为初始模板的mRNA首先被反转录为互补DNA(cDNA),然后通过PCR扩增用于下游分析。相对于其他检测mRNA的技术,如Northern印迹分析、RNA酶保护分析或原位杂交,RT-PCR在检测任何基因的RNA转录物时,其相对丰度如何,都明显更为稳定。因此,RT-PCR被广泛用于定量研究基因表达、检测转录变体以及生成用于克隆和测序的cDNA模板。
逆转录聚合酶链反应原理 为了将PCR应用于RNA的研究,RNA样品必须首先使用酶逆转录酶进行逆转录过程以生成cDNA。这种RNA依赖性DNA聚合酶在逆转录引物、脱氧核苷酸(dNTPs:dATP、dTTP、dGTP和dCTP)和酶辅因子的协助下,催化从其各自的靶RNA序列合成cDNA。然后将得到的cDNA用作PCR扩增的模板,根据反转录和PCR的执行方式,该过程可分为一步RT-PCR或两步RT-PCR。 视频1 演示逆转录聚合酶链反应关键步骤的动画视频教程:(1)逆转录,(2)变性,(3)引物退火,(4)引物延伸
表1 用于PCR、实时PCR和逆转录PCR的脱氧核苷酸(dNTPs)
在一步RT-PCR中,反转录(即cDNA合成)和PCR在同一反应容器和缓冲液中进行。这种简单方便的单管设计在进行少量分析时效果良好,适用于高速、高通量应用。在一步RT-PCR中,需要序列特异性引物来指导cDNA的合成和扩增。由于特定引物比随机引物更容易在更高的反应温度下退火,因此在使用这种方法时,好利用具有高热稳定性的逆转录酶。 虽然一步RT-PCR方法有几个优点,但也有一些需要注意的地方。由于反转录和PCR都发生在同一试管中,因此不能单独优化反应条件,这可能会在不同程度上影响产率或反应效率。此外,由于所有合成的cDNA在随后的PCR步骤中被消耗,因此需要额外的原始RNA样本小份以重复反应或评估其他基因的表达。 图1 一步RT-PCR步骤
一步法RT-PCR的优缺点及应用
两步法RT-PCR 在两步RT-PCR中,逆转录和PCR在具有不同缓冲液、反应条件和启动策略的单独反应容器中进行。两步RT-PCR使用随机六聚体、低聚dT引物和基因特异性引物的混合物进行,提供样本中所有RNA物种的完整cDNA档案,而不是像一步法那样仅使用基因特异性引物。此外,反转录和PCR的解偶联允许对每个反应进行单独优化,以获得大效率和序列。这允许在反转录过程中获得更高的cDNA产量,并为cDNA样本的储存提供了机会,以供将来的扩增反应或下游应用。 虽然两步RT-PCR具有高灵敏度,但与一步RT-PCR相比,它更耗时,更不适合于高速、高通量的应用。它需要额外的开管步骤、更多的移液管和样品处理,这会增加可变性和污染风险。 图2 两步RT-PCR步骤
两步法RT-PCR的优缺点及应用
RT-PCR扩增产物的检测 在RT-PCR中,有两种主要的方法可以检测扩增子的产生。第一种方法在所有PCR循环完成后分析扩增子扩增,称为终点RT-PCR。第二种方法在PCR循环过程中实时测量扩增子浓度,称为实时RT-PCR或定量RT-PCR(RT-qPCR)。在RT-qPCR中,几种不同类型的化学试剂可用于实时检测扩增子的产生,包括Helixyte 绿色、分子信标和TaqMan探针。 终点RT-PCR 终点 RT-PCR 分析基于 PCR 反应的平台期,用于在 PCR 反应的所有循环完成后分析扩增产物。在此方法中,扩增子通过琼脂糖凝胶电泳分离,并使用 DNA 结合染料(如溴化乙锭 (EtBr))进行检测,以确定 500 至 30,000 bp 范围内的 DNA 分子大小。虽然 EtBr 是常用的 DNA 染料,但它具有致突变性和吸入毒性。相反,请考虑使用更、更环保、的替代品,例如 Gelite X100(货号 17706)、Helixyte Green(货号 17590)、Helixyte Gold(货号 17595)、Gelite Green(货号 17589)或 Gelite Orange(货号 17594)。 终点RT-PCR的优缺点及应用
表2.琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳用核酸染色剂
定量RT-PCR 在定量RT-PCR(RT-qPCR)中,荧光DNA插入染料或序列特异性荧光探针被整合到RT-PCR反应中,从而允许在PCR的指数阶段实时测量扩增子浓度。通过将扩增和检测结合到单个步骤中,RT-qPCR提供了更高的精度和准确性,并产生了比终点RT-PCR大几个数量级的动态范围的定量数据。由于其较高的敏感性,RT-qPCR通常用于分析基因表达中的mRNA,检查逆转录病毒的存在,并验证通过阵列分析获得的结果。 Helixyte Green RT-qPCR检测 使用荧光DNA插层染料(如Helixyte)进行RT-qPCR Green(货号17591)为实时检测和定量PCR扩增物提供了简单、经济的方法。Helixyte 绿色与双链DNA(dsDNA)结合,激发时发光。随着扩增子浓度随每个连续扩增周期的增加而增加,Helixyte Green的荧光强度也随之增加,与每个PCR循环中存在的双链DNA数量成比例。Helixyte 绿色比高度诱变的EtBr得多,可用于检测任何双链DNA序列的扩增,具有更高的灵敏度和更少的PCR抑制。由于DNA插入染料会与任何双链DNA结合,如引物二聚体和非特异性产物,因此使用设计良好的引物以避免扩增非靶序列非常重要。为确保扩增特异性并检查引物二聚体伪影,扩增后应进行熔融曲线分析。 表3. 用于 qPCR 的双链 DNA 结合染料
用于 RT-qPCR 的 TaqMan® 探针和分子信标 在RT-qPCR 中,荧光标记的目标特异性探针用于实时测量 DNA 扩增。这种方法受益于极高的特异性,并为终用户提供了在单个反应中多重检测多个目标的机会。在许多可用的基于探针的 RT-qPCR 化学中,TaqMan® 探针和分子信标是使用广泛的,两者都依赖于共振能量转移 (FRET) 来产生荧光信号。 TaqMan® 探针依赖于 Taq DNA 聚合酶的 5'-核酸酶活性。与目标靶标互补的短寡核苷酸序列在 5' 端用荧光报告染料标记,在 3' 端用非荧光猝灭染料标记。在 PCR 循环期间,引物和探针与目标退火。当 Taq DNA 聚合酶与探针上游的引物结合并延伸时,杂交的探针被水解,含有报告染料的片段被释放。现在可以检测荧光信号,产生的荧光信号量与产生的 qPCR 产物量成正比。 与 TaqMan® 探针一样,分子信标在 5' 端用荧光报告染料标记,在 3' 端用非荧光淬灭染料标记。然而,该方法不依赖于 Taq DNA 聚合酶的 5' 核酸酶活性来产生信号,而是分子信标被设计为在整个扩增过程中保持完整。在没有目标的情况下,分子信标由于其自我互补的茎结构而保持在“发夹”确认中。这使荧光报告基因和淬灭染料彼此靠近,从而防止探针发荧光。当分子信标与其目标杂交时,荧光报告基团和猝灭基团分离,报告基团染料以其特征波长发光。 注:经典荧光染料、TideFluor/TideQuencher染料,可在百萤网站查询 表4. FRET 寡核苷酸的推荐 FRET 对
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